Revista Americana de Medicina Respiratoria - Volumen 22, Número 3 - Septiembre 2022

Artículos Especiales

Diagnóstico bacteriológico de la tuberculosis. Estado actual del conocimiento Primera parte
Bacteriologic Diagnosis of Tuberculosis. Current State of Knowledge First part

Autor : Símboli, Norberto Fabián1, González, Claudio Daniel2 Grupo de Estudio Diagnóstico de TB Amiano, Nicolás Oscar3; Armitano, Rita Inés4; Bisero, Elsa Delia5; Cerqueiro, María Cristina6; Duré, Roberto Miguel7; Fruhwald, Gladys Esther8; García, Verónica Edith3; González, Claudio Daniel2; González, Norma Edith9; Lombardero, Lorena Andrea10; Luque, Graciela Fabiana5; Melillo, Karina Claudia5; Símboli, Norberto Fabián1

1 Servicio de Micobacterias del Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas-ANLIS Dr. Carlos G. Malbrán, Ciudad de Buenos Aires, Argentina. 2Unidad Neumotisiología, Hospital General de Agudos José M. Ramos Mejía, Ciudad de Buenos Aires. Argentina. 3Investigador/a del CONICET. Laboratorio de Inmunidad y Tuberculosis del Instituto de Química Biológica, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales (IQUIBI­CEN), Universidad de Buenos Aires (UBA) Ciudad de Buenos Aires. Argentina. 4Laboratorio de Micobacterias. Hospital General de Agudos Parmenio Piñero. Ciudad de Buenos Aires. Argentina. 5Servicio de Pediatría. Sección Neumonología Infantil, Hospital Nacional Prof. Dr. Alejandro Posadas. El Palomar, Provincia de Buenos Aires. Argentina. 6Consultora de la Sección Tisiología. Hospital de Niños Dr. Ricardo Gutiérrez. Ciudad de Buenos Aires. Argentina. 7Unidad de Broncoscopia Hospital de Infecciosas “Francisco J. Muñiz”. Ciudad de Buenos Aires. Argentina. 8Servicio de Neumonología de la Obra Social del Personal de Edificios de Renta y Horizontal (OSPERYH). 9Unidad Neumotisiología, Hospital General de Niños Pedro de Elizalde. Ciudad de Buenos Aires. Argentina.

https://doi.org/10.56538/ramr.NNBE9983

Correspondencia : Claudio Daniel González (claudiodgonzalez57@gmail.com)

Recibido: 17/11/2021

Aceptado: 17/03/2022

DIAGNÓSTICO DE LA TUBERCULOSIS

Claudio D. González

Uno de los principales desafíos para los Programas de Control de Tuber­culosis (PCT) lo constituye la detección temprana de formas abiertas de la enfermedad. La Organización Mundial de la Salud (OMS) ha estimado que el desarrollo de un método de diagnóstico de tuberculosis (TB) que ofreciera un 85% de sensibilidad y un 95% de especificidad sobre muestras de esputo permitiría salvar unas 400 000 vidas al año.1 En condiciones ideales, sería necesario, además, que un método accesible y preciso, aplicado en colectivos de mayor vulnerabilidad, pudiera aportar tanto a la identificación de especie como a su perfil de resistencia, en especial si este implicara un mayor riesgo de fracaso terapéutico.1 En la última década, el desarrollo del sistema de diag­nóstico GeneXpert MTB/RIF ha significado un gran avance en ese sentido. A un costo de USD 9,98 por determinación (en los 145 países subsidiados), el método permitió acercarse a los objetivos mencionados, es decir, la detec­ción precoz de la TB y la detección de resistencia a rifampicina, usualmente tomada como un indicador de fracaso terapéutico.2-4

Desafortunadamente, la emergencia de la pandemia por el SARS-CoV-2 impactó negativamente sobre los logros obtenidos. Dos aspectos de la atención de pacientes con TB fueron afectados: uno, la provisión regular y completa de insumos para el diagnóstico y tratamiento de la enfermedad; el otro aspecto se refirió a las demoras y postergaciones en las consultas generadas por las medidas de confinamiento y distanciamiento social, adoptadas por la mayoría de los países.

Algunos estudios, a través de modelos matemáticos, han estimado el impacto directo e indirecto de la pandemia sobre el funcionamiento de los PCT.5

El objetivo de este trabajo es el de revisar el estado del conocimiento actual sobre los méto­dos vigentes de diagnóstico de TB. Con el fin de agilizar la lectura, se divide este documento de actualización en tres publicaciones. Esta primera publicación incluye los métodos de diagnóstico di­rigidos a identificar el agente causal y su perfil de sensibilidad, es decir, el diagnóstico bacteriológico o de certeza. La segunda entrega abordará los mé­todos que evalúan las respuestas del huésped ante el bacilo, esto es, el diagnóstico no bacteriológico o presuntivo, donde se incluyen algunos métodos aún bajo investigación. La tercera publicación se reservará al diagnóstico de TB en niños.

DIAGNÓSTICO BACTERIOLÓGICO DE TUBERCULOSIS

Norberto Símboli

La Red Nacional de Laboratorios de Diagnóstico de Tuberculosis está organizada en una estructura piramidal donde cada nivel tiene requerimientos específicos de infraestructura y bioseguridad, las cuales son definidas por las actividades y métodos diagnósticos que se realizan en cada laboratorio. A medida que aumenta el nivel del laboratorio (1 a 3), las tecnologías se vuelven más avanzadas y, como resultado, las habilidades, la competencia y los requisitos de capacitación necesarios para el personal aumentan.6

Los métodos de diagnóstico se estratifican en los tres niveles de laboratorio, de acuerdo con el nivel de riesgo de cada procedimiento, la situación epidemio­lógica de la enfermedad y los recursos disponibles.6 Siguiendo dicho ordenamiento, este documento tiene como propósito revisar el estado del conocimiento actual sobre las técnicas disponibles y ofrecer un abordaje inicial hacia métodos de diagnóstico bacte­riológico aún en desarrollo. Los niveles mencionados de complejidad son los siguientes:

1. PRIMER NIVEL DE COMPLEJIDAD

Corresponde a los laboratorios periféricos ubica­dos, en algunos casos, en centros de salud, que ofrecen examen directo de esputo (ED) por la técnica de Ziehl Neelsen (ZN) y cultivo en medio Kudoh-Ogawa (KO).

Actualmente se está incorporando el sistema de diagnóstico GeneXpert MTB-RIF, TB-LAMP (loop-mediated isothermal amplification) y el LF-LAM (lateral flow lipoarabinomannan assay).6

2. SEGUNDO NIVEL DE COMPLEJIDAD

Se incluyen aquí laboratorios de hospitales locales o regionales con capacidad para realizar todas las actividades del nivel 1 mencionadas, más cultivo en medios sólidos o líquidos, identificación del omplejo Mycobacterium tuberculosis (M. tubercu­losis) y pruebas de sensibilidad (PS) a drogas de primera línea (isoniacida y rifampicina), a los que se suman aquellos con capacidad para realizar FL-LPA (line probe assay para drogas de primera línea) y SL-LPA (line probe assay para drogas de segunda línea), siempre a partir de muestras de esputo con baciloscopia positiva.6

3. TERCER NIVEL DE COMPLEJIDAD

Está integrado por laboratorios de referencia nacional, provincial o laboratorios especializados que cuentan con los recursos para realizar, además de los estudios citados en los otros dos niveles, PS a drogas de segunda línea y técnicas moleculares complejas.

1. PRIMER NIVEL DE COMPLEJIDAD

Examen directo (ED)

Desde hace tiempo los países con recursos li­mitados se han basado en la microscopia como método principal para detectar el M. tuberculosis. Si bien es económico y requiere unas condicio­nes mínimas de bioseguridad, el ED posee una limitada sensibilidad, especialmente en pacientes que viven con VIH/sida y en niños menores de 5 años, y no proporciona información sobre el perfil de resistencia a drogas de los bacilos.7 A pesar de que la microscopia no es capaz de diferenciar M. tuberculosis de otras micobacterias, en los países con alta endemia de TB, una baciloscopia positiva de una muestra respiratoria de un paciente inmu­nocompetente tiene muy alto valor predictivo para el diagnóstico de TB.7

La coloración de ZN ha sido la técnica más em­pleada para el diagnóstico de TB en los países de América Latina.7 Comparada con la microscopia de fluorescencia (MF), la microscopia convencional tiene como ventaja que requiere un entrenamiento más sencillo, ya que la capacidad de identificar el bacilo por esta metodología es más fácil de adqui­rir. Además, el ED a través de la coloración de ZN continúa siendo, en nuestro país, un recurso útil en la pesquisa de TB entre sintomáticos respiratorios (SR), esto es, personas con tos y expectoración por más de dos semanas.7

En 2011, la OMS recomendó el uso de la MF con lámpara LED. La MF es, al menos, 10% más sensible que la microscopia convencional de ZN.8 Dado que reduce el tiempo necesario para la reali­zación de la lectura y requiere personal adiestrado, está especialmente recomendada para laboratorios con alta carga de trabajo. Comparado con la MF convencional (con lámpara de mercurio), la MF con lámpara LED ofrece considerables ventajas opera­tivas porque tiene una elevada vida útil, no genera calor y no tiene los riesgos de contaminación del ambiente en caso de rotura. De ser adoptado este método en lugar de ZN, el centro debería cumpli­mentar los requisitos técnicos exigidos por la OMS y el correspondiente monitoreo externo de calidad.8 En los últimos años, están disponibles pruebas rá­pidas y sensibles basadas en métodos moleculares para reemplazar o complementar la microscopia.

Cultivo por el método de Kudoh-Ogawa

Los laboratorios sin condiciones adecuadas para cultivar con métodos que requieren centrifugación y que se encuentran alejados de un laboratorio de referencia o que no cuentan con un sistema de transporte frecuente de muestras pueden sembrar las muestras empleando el método de Kudoh- Ogawa y enviar los tubos sembrados al laboratorio de referencia.9

Método GeneXpert MTB/RIF- MTB/ULTRA- Xpert XDR

El desarrollo del ensayo Xpert® MTB/RIF para la plataforma GeneXpert se completó en 2009 y se considera un avance importante en la lucha contra la TB. Por primera vez, una prueba molecular es lo suficientemente simple y robusta como para ser introducida y utilizada fuera de los entornos de los laboratorios convencionales.10

Detecta el Complejo Mycobacterium tuberculosis (CMTB) y también las mutaciones más frecuentes, que confieren resistencia a la rifampicina usando tres cebadores específicos y cinco sondas molecu­lares únicas para asegurar un alto grado de espe­cificidad. Es un sistema automatizado cerrado de extracción y amplificación en tiempo real. Permite detectar CMTB en un gran número de muestras clínicas en 2 h con un límite de detección de 114 ufc/mL, y razonables condiciones de accesibilidad, costo y seguridad.2, 3, 10

Es una prueba rápida y sencilla que puede ser utilizada en laboratorios con infraestructura mí­nima y permite incrementar la detección de casos de TB en comparación con la microscopia. Esto re­sulta ventajoso a la hora de disminuir la inversión en infraestructura y equipamiento en los servicios de salud. Se suman otros beneficios para la salud pública, como la posible reducción en la transmi­sión secundaria de cepas resistentes, aspecto que adquiere especial relevancia en el contexto de la epidemiologia de tuberculosis multirresistente (TB-MR) en nuestro país, en el cual el mayor impulso generador de TB-MR está asociado a la transmisión de cepas en la comunidad.11

En muestras pulmonares, cuando se considera entre distintos estudios su sensibilidad y su es­pecificidad agrupadas (overall pooled sensitivity-specificity) frente al ED, su rendimiento alcanzó 88% y 99%, respectivamente.2-4 Sobre muestras de esputo ED/cultivo positivas, la sensibilidad fue del 98%, mientras que sobre aquellas ED negativas/ cultivo positivo, la sensibilidad agrupada fue del 80%. Este desempeño, tanto reemplazando al ED como prueba inicial o frente a muestras ED nega­tivas, permitiría mejorar en un 30% la detección por baciloscopia con respecto a la técnica de ZN, y reduciría considerablemente el tiempo de inicio del tratamiento.12 Este rendimiento se extiende también al colectivo de pacientes que conviven con VIH, duplicando la tasa de detección de TB en esa población, donde el rendimiento global alcanzó al 79%.2, 3

Con el mismo cartucho el sistema ofrece una segunda utilidad, la de realizar la prueba de sen­sibilidad (PS) a la rifampicina, que alcanza una sensibilidad y especificidad agrupadas del 95% y el 99%, respectivamente.2, 3

Por otra parte, sobre muestras extrapulmonares de adultos y niños, la sensibilidad y especificidad agrupadas más altas del Gene-Xpert frente al cultivo se alcanzaron en muestras ganglionares (84,9% y 94,2%, respectivamente), seguidas por las de lavado gástrico y aspirado (83,8% y 98,1%, res­pectivamente), de líquido cefalorraquídeo (79,5% y 98,6%), y por último de líquido pleural (43,7% de sensibilidad y 98,1% de especificidad agrupadas, respectivamente).2, 3

El Xpert® MTB/RIF Ultra ha sido desarrollado como ensayo de nueva generación para superar las limitaciones del Xpert MTB/RIF y utiliza la misma plataforma GeneXpert®.13

Para mejorar la sensibilidad para la detección de CMTB, el Xpert Ultra incorpora dos blancos multicopia diferentes de amplificación (IS6110 e IS1081) y una cámara de reacción de ADN más grande que Xpert MTB/RIF (reacción de PCR de 50 μL en Ultra versus 25 μL en Xpert MTB/RIF.13

También incorpora una amplificación anidada de ácido nucleico, ciclos térmicos más rápidos y fluidos y enzimas mejorados. Esto ha resultado que el Xpert Ultra tenga un límite de detección de 16 ufc/mL (comparado a 114 ufc/mL del Xpert MTB/ RIF). Para mejorar la precisión de la detección de resistencia a rifampicina, el Ultra incorpora análi­sis basado en la temperatura de fusión en lugar de una PCR en tiempo real. Específicamente, cuatro sondas identifican mutaciones de resistencia a ri­fampicina en la región determinante del gen rpoB, las que cambian su temperatura de fusión respecto de la temperatura de referencia del tipo salvaje.13

La investigación de TB con cartuchos MTB/RIF ha demostrado consistentemente ser más sensible que la baciloscopia. La versión Ultra de los car­tuchos de Xpert MTB/RIF es aún más sensible, especialmente en muestras ED negativas cultivo positivo y en muestras de pacientes con VIH, pero menos específica que la versión anterior, sobre todo entre pacientes con antecedentes de tratamiento para TB.9

Entre las personas con TB y TB resistente a la rifampicina (TBRR), se deben realizar con pronti­tud pruebas adicionales de resistencia al menos a la isoniacida y las fluoroquinolonas, respectivamente, para guiar las decisiones de tratamiento.

En 2020, la OMS encargó una revisión sistemá­tica de los datos publicados y no publicados sobre tres clases de pruebas de amplificación de ácidos nucleicos que no habían sido revisadas previa­mente por esa organización.14 Una de ellas fue el nuevo cartucho MTB/XDR, en el que se observó una excelente sensibilidad y especificidad para detectar rápidamente la resistencia a isoniacida, fluoroquinolonas y aminoglucósidos.

Recientemente la OMS recomendó el uso del cartucho para la detección rápida de mutaciones que confieren resistencia a estas drogas.14 Esta re­comendación se basó en el análisis de tres estudios que incluyeron muestras de esputos de 1605 parti­cipantes. De este análisis, resultó que la sensibilidad combinada general de este cartucho (IC del 95%) para la detección de resistencia a la isoniacida fue del 94,2% (89,3% al 97,0%) y la especificidad fue del 98,0% (95,2% al 99,2%). La sensibilidad combinada general (IC del 95%) para la detección de resisten­cia a las fluoroquinolonas fue del 93,1% (88,0% al 96,1%) y la especificidad fue del 98,3% (94,5% al 99,5). La sensibilidad global combinada (IC del 95%) para la detección de resistencia a la amikacina fue del 89,1% (80,9% al 94,1%) y la especificidad fue del 99,5% (96,9% al 99,9%). La PS fenotípica se utilizó como estándar de referencia para las tres estima­ciones mencionadas anteriormente. La sensibilidad general (IC del 95%) para la detección de resistencia a la etionamida fue del 96,4% (92,2% al 98,3%) y la especificidad fue del 100,0% (82,5% al 100,0%). La secuenciación génica de la región promotora inhA se utilizó como estándar de referencia para la detección de resistencia a la etionamida.14

El sistema Xpert en todas sus formas de presen­tación puede ser implementado en laboratorios de baja complejidad, con las mismas condiciones que se requieren para realizar la baciloscopia.

Recomendaciones sobre la utilización del Xpert MTB/Rif y ULTRA:

La OMS recomienda el uso del Xpert MTB/RIF y Xpert Ultra como pruebas iniciales en adultos y niños con signos y síntomas de TB pulmonar y extra­pulmonar basado en la evidencia científica actual.15

Como al momento de la realización de este con­senso en nuestro país existe un limitado acceso a pruebas rápidas moleculares debido a la escasa disponibilidad de equipos Gene-Xpert, esta prueba está recomendada principalmente para su uso en los siguientes colectivos:

I. Pacientes adultos o pediátricos con alta sospe­cha clínica y epidemiológica de TB y con riesgo de multirresistencia (recomendación fuerte).

II. Pacientes adultos o pediátricos con alta sospecha clínica y epidemiológica de TB o TBMR y que conviven con el VIH (recomendación fuerte).

III. Pacientes adultos o pediátricos con alta sospe­cha clínica y epidemiológica de TB meníngea (recomendación fuerte).

IV. Pacientes adultos o pediátricos con alta sospe­cha clínica de TB extrapulmonar (recomenda­ción condicional).15

Como indicación se plantea su uso en los si­guientes casos:

a) Muestras respiratorias de pacientes (adultos o pediátricos) que presentan signos y síntomas compatibles con TB y con mayor riesgo de te­ner TB resistente: personas que conviven con el VIH, inmunosuprimidos, personal de salud, contacto de paciente con TB-RR o TBMR, pa­cientes con antecedentes de tratamiento con drogas antituberculosas con más de 1 año de finalizado el tratamiento.

b) Muestras de líquido cefalorraquídeo, aspirado de nódulo linfático, líquido sinovial, líquido pleural, líquido peritoneal, líquido pericárdico, orina y biopsias provenientes de pacientes (adultos o pediátricos) con alta sospecha clínica o epide­miológica de TB extrapulmonar.15

Estas recomendaciones son sometidas a revi­siones periódicas, en la medida en que progrese el desarrollo tecnológico y se produzca evidencia científica que lo justifique.

Se recomienda el uso del cartucho Xpert MTB / XDR en muestras de esputo de personas con TBRR.

Truenat MTB, MTB Plus y MTB-Rif DX

Este es un nuevo método molecular desarrollado en India que puede ser utilizado en el mismo nivel de laboratorio que el Gene-Xpert. Se basan en una micro-PCR en tiempo real que permite la detección del CMT y su resistencia a la rifampicina a partir de una muestra de esputo en menos de 1 h. El Truenat MTB y el MTB Plus pueden ser usados como prueba diagnóstica inicial en adultos y niños con signos y síntomas de TB pulmonar, mientras que el MTB-RIF Dx es usado como una prueba para detectar resistencia a la rifampicina en aquellas muestras con resultados positivos en la prueba inicial.16

TB-LAMP (Loop-mediated isothermal amplification/ amplificación isotérmica mediada por enlace de ácidos nucleicos)

El TB-LAMP es un ensayo molecular comercial ba­sado en amplificación isotérmica mediada por bucle y requiere una mínima infraestructura de laboratorio y requisitos de bioseguridad.17 Ha sido evaluado como una prueba rápida (<2 h) en el punto de atención como una alternativa al ED de esputo, que sigue siendo la prueba de diagnóstico primaria para TB pulmonar en entornos con recursos limitados.

En enero de 2016, la OMS convocó una reunión al Grupo de Desarrollo de Directrices (GDG), para revisar la evidencia de los estudios publicados desde el 2012 hasta ese momento.17 La revisión incluyó to­dos los estudios prospectivos que evaluaron el ensayo TB-LAMP en muestras de esputo de adultos con sig­nos y síntomas compatibles con TB pulmonar que se realizaron en un entorno de carga de TB intermedia o alta. De esta revisión, la cual incluyó veinte estu­dios (4760 pacientes adultos), el TB-LAMP resultó con una sensibilidad combinada 15% mayor que el ED para detectar TB pulmonar en adultos (el 78% en comparación con el 63%), aunque la especificidad combinada fue un 2% más baja (el 98% en compara­ción con el 100%). Esto puede explicarse en parte por la identificación de casos de TB que se clasificaron erróneamente como TB negativos mediante el uso de cultivos de referencia. Entre adultos que viven con VIH y signos y síntomas de TB pulmonar, la evaluación de la precisión de TB-LAMP demostró una sensibilidad y especificidad similar al ED de es­puto (64% y 62%) y (99% y 99%), respectivamente.17

De acuerdo con esta evaluación de la evidencia y considerando los costos y beneficios asociados con el uso de TB-LAMP, la OMS lo recomienda para ser utilizado solo en muestras de esputo en alguna de las dos formas siguientes:

a) Como prueba de reemplazo de la baciloscopia para el diagnóstico de TB pulmonar en adultos con sig­nos y síntomas compatibles con TB (condicional recomendación, evidencia de muy baja calidad).

b) Como prueba adicional al ED en adultos con sig­nos y síntomas consistentes con TB pulmonar, especialmente cuando los ED de esputo son ne­gativas (recomendación condicional, evidencia de muy baja calidad).

En nuestro país, aún este método no se encuentra disponible.

LF-LAM (lateral flow lipoarabinomannan assay/inmunocromatografía de flujo lateral de lipoarabinomananos)

Las pruebas basadas en la detección del antígeno micobacteriano lipoarabinomanano (LAM) en la orina han surgido como posibles pruebas rápidas en el punto de atención para el diagnóstico de la TB.18 El antígeno LAM es un lipopolisacárido presente en las paredes celulares de las micobac­terias, que se libera de células bacterianas meta­bólicamente activas o en degeneración y parece estar presente solo en personas con TB activa. Esta prueba tendría ventajas sobre las basadas en esputo porque la orina es fácil de recolectar y almacenar, y carece de los riesgos de control de infecciones asociados con la recolección de esputo.18

El ensayo de detección de LAM en orina a través de una inmunocromatografía de flujo lateral se encuentra comercialmente disponible. La prueba se realiza manualmente aplicando 60 μL de orina a la tira reactiva e incubando a temperatura ambien­te durante 25 min. Luego, la tira se inspecciona visualmente. La intensidad de cualquier banda visible en la tira reactiva se clasifica comparándola con las intensidades de las bandas en una tarjeta de referencia proporcionada por el fabricante.18

Varios estudios y metaanálisis de una prueba de una generación anterior (LAM-ELISA), han demos­trado una buena sensibilidad de la detección del LAM urinario en presencia de coinfección VIH-TB, la cual aumenta aún más cuando los recuentos de LTCD4+ son más bajos. Este hallazgo contrasta con los métodos de diagnóstico tradicionales para la TB en pacientes con VIH. Varias hipótesis pueden explicar la mayor sensibilidad de la detección de LAM en orina en pa­cientes con inmunosupresión relacionada con el VIH: una mayor carga bacilar y de antígeno, una mayor probabilidad de TB en el tracto genitourinario y una mayor permeabilidad glomerular para permitir un aumento de niveles de antígeno en la orina.18

Estudios publicados han informado tasas de mortalidad mucho más altas en pacientes con VIH con recuentos bajos de LTCD4+ que tienen LAM urinario detectable en comparación con individuos LF-LAM negativos.18 Dado el potencial del ensayo para ayudar a reducir la mortalidad en personas que viven con el VIH, que la prueba es fácil de realizar y que requiere una infraestructura mínima de biose­guridad, la OMS encargó una revisión sistemática del uso del ensayo LF-LAM para el diagnóstico y detección de TB activa en personas que viven con el VIH. Luego de esa revisión la organización realizó las siguientes recomendaciones de uso:15 , 18

a) Excepto para las personas con infección por VIH con bajo recuento de LTCD4+ o que están gravemente enfermos, LF-LAM NO DEBE utilizarse para el diagnóstico de TB (fuerte recomendación, evidencia de baja calidad).

b) LF-LAM se puede utilizar para ayudar en el diagnóstico de TB en pacientes con VIH y con signos y síntomas de TB (pulmonar o extra­pulmonar) que tienen un recuento de células LTCD4+ menor o igual o superior a 100 células/ μL, o pacientes VIH positivos que están grave­mente enfermos independientemente del re­cuento de LTCD4+ o con recuento desconocido (recomendación condicional; evidencia de baja calidad).

En la Tabla 1 se resumen los métodos de diag­nósticos correspondientes a este nivel.

Tabla 1. Métodos de diagnóstico correspondientes al primer nivel de complejidad
Imagen

2. SEGUNDO NIVEL DE COMPLEJIDAD

Cultivo

Como se expresó con anterioridad, el ED sigue siendo la prueba de diagnóstico primaria para TB pulmonar en entornos con recursos limitados.

El cultivo complementa al ED, ya que permite evidenciar bacilos viables presentes en escasa cantidad en una muestra de lesión, caracterizarlos y conocer si es sensible o resistente a las drogas antituberculosas. El rol del cultivo es más impor­tante en escenarios con mediana o baja incidencia de TB, con alta coinfección del bacilo de la TB y VIH y con carga mediana o alta de TBMR.19

Mediante el cultivo es posible incrementar la confirmación del diagnóstico de TB en aproxima­damente 15%-20% del total de casos y en 20%-30% de los casos de TB pulmonar. Si se considera el total de casos con diagnóstico de TB pulmonar confir­mado bacteriológicamente, la baciloscopia detecta el 70%-80% y el cultivo, el restante 20-30%.19

El cultivo en medio sólido continúa usándose como testigo frente a los medios de cultivos líqui­dos y automatizados más modernos y mantiene su condición de método de referencia frente a otros sistemas de diagnóstico. El medio sólido tiene la ventaja de ser económico pero la detección del desarrollo es más tardía.

Métodos de cultivo en medio líquido

La principal ventaja de estos sistemas frente al cul­tivo tradicional sigue midiéndose en la rapidez de los resultados. Estos métodos utilizan, o bien, un sistema colorimétrico para informar del crecimien­to bacteriano (MB Bact Alert), o bien, la detección de oxígeno consumido detectado por fluorescencia (MGIT 960). Para muestras de sangre y médula ósea, se realiza la técnica de lisis-centrifugación para hemocultivos.7

La utilización de estos medios exige condiciones de bioseguridad diferentes respecto a los medios sólidos, aunque pueden ser utilizados en este nivel de complejidad si se cuenta con esas condiciones.

Indicaciones del cultivo

a) Dado que las lesiones en niños suelen ser pau­cibacilares, como recomendación de fortaleza se sugiere que todas las muestras pediátricas deben cultivarse, ya que aportan un 20% de rendimiento sobre el ED.3 Se incluyen en la indicación, las siguientes muestras respiratorias por orden de preferencia: esputo, aspirado gástrico en niños SR con radiografía (Rx) de tórax patológica, esputo inducido, lavado broncoalveolar y bron­coaspirado; entre las muestras no respiratorias, el contenido de cavidades serosas y el de biopsias.3

b) Muestras de pacientes sintomáticos, con signos clínicos o Rx u otras imágenes compatibles con TB y alguna de las siguientes características:

• Baciloscopia negativa de tres muestras respira­torias.

• Localización extrapulmonar de la enfermedad.

• Pacientes inmunosuprimidos, particularmente VIH positivos.

• Baciloscopia positiva en lavado gástrico, lavado bronquial o hisopados.

• Antecedentes de tratamiento antituberculoso, especialmente si se registró pérdida de segui­miento o fracaso.

• Exposición a infección por bacilos resistentes a las drogas (contactos de casos con TB resistente, internados o trabajadores de instituciones de salud o de prisiones donde se registran casos con TB-MR).7, 19

• Como complemento de las pruebas rápidas diag­nósticas cuando son utilizadas como primera prueba diagnóstica.

Pruebas de sensibilidad a drogas de primera línea (H y R). Pruebas fenotípicas

En este nivel de complejidad, el método de las pro­porciones en medio de Löwenstein-Jensen (método de Canetti, Rist y Grosset) continúa aportando la reconocida sencillez y confiabilidad que le ha va­lido su consideración como método de referencia frente a los métodos genotípicos de base molecular. Es un método económico, pero tiene la desventaja que para obtener un resultado de sensibilidad se demora entre 30 a 40 d.

Una alternativa económica para acelerar los resultados es el ensayo de nitrato reductasa (NRA). Idealmente, el método debe ser realizado directamente con muestras ED positivo recién recolectadas o en cuanto se obtiene desarrollo en el primocultivo. Esta prueba cuenta con el aval de la OMS por considerarse una PS accesible y eficaz para la determinación de resistencia a las drogas isoniacida y rifampicina.19

Otra alternativa, aunque más costosa, es la utilización de medios de cultivos líquidos (MGIT) que permiten acelerar los resultados, ya que em­plean equipos semiautomatizados que detectan el desarrollo antes que sea visible.19

Indicaciones de PS

Idealmente, todos los casos con diagnóstico de TB confirmado bacteriológicamente deben tener acceso a la PS, al menos para los fármacos que son claves para el éxito del tratamiento (H y R). Esto requiere garantizar el acceso universal a las pruebas rápidas recomendadas (Xpert, LPAS, etc.). En el proceso que lleva a alcanzar este objetivo, se debería priorizar la realización de la PS para los casos con las siguientes características que elevan el riesgo de resistencia a los fármacos.7

a) Falla de tratamiento.

b) Antecedentes de tratamiento previo, irregula­ridad en el cumplimiento de un tratamiento o prescripción de un esquema incompleto o inadecuado.

c) Exposición a infección por TB resistente a los fármacos.

d) Niños.

e) Pacientes inmunosuprimidos (personas que viven con VIH y o diabetes, etcétera).

f) Residencia anterior en países con alto nivel de resistencia a fármacos (Ecuador, Perú, algunos países asiáticos y de Europa del Este).

g) Personas que abusan del alcohol o drogas.

Nuevas plataformas

Las nuevas tecnologías de detección rápida de la TB y la resistencia a la rifampicina están cada vez más disponibles y adoptadas por los países. Son varios los fabricantes que han desarrollado plata­formas automatizadas para la detección de TB y la resistencia a isoniacida y rifampicina (Abbott, Bec­ton Dickinson, Roche, Hain Lifescience/Bruker) basadas en la amplificación de ácidos nucleicos.20

Las pruebas que pertenecen a esta clase son más rápidas y menos complejas de realizar que las pruebas de sensibilidad fenotípicas a fármacos basadas en cultivos y los ensayos de sonda de línea (LPA). Tienen la ventaja de ser en gran parte auto­matizadas y se pueden utilizar como prueba inicial para la detección de TB y la resistencia a ambos medicamentos de primera línea simultáneamente (rifampicina e isoniacida). Ofrecen resultados pre­cisos en forma rápida y porque pueden procesar un gran número de muestras son adecuados para laboratorios de mediana y alta carga de pruebas de sensibilidad. Por tanto, estas tecnologías son adecuadas para áreas con una alta densidad de población y sistemas rápidos de referencia de muestras.20 En la Tabla 2, se resumen los métodos de diagnósticos correspondientes a este nivel.

Tabla 2. Métodos de diagnóstico correspondientes al segundo nivel de complejidad
Imagen

3. TERCER NIVEL DE COMPLEJIDAD

Identificación de especie. Pruebas de sensibilidad a drogas de primera y segunda línea

Pruebas fenotípicas para identificación de especie

Además del sistema tradicional de identificación de especie en cultivos de medios sólidos, existe una inmunocromatografía de flujo lateral que identifi­ca cualitativamente el Complejo M. tuberculosis a partir de los cultivos líquidos positivos. Este siste­ma detecta una proteína (MPT64) segregada por las bacterias al medio de cultivo. Es una técnica simple, rápida, de bajo costo y alta sensibilidad y especificidad; como desventajas, no permite diferen­ciar entre especies de ese complejo y sus resultados deben contextualizarse con la información clínica.19 También pueden emplearse para la identificación del CMTB en cultivos de medios sólidos positivos.

Prueba de sensibilidad fenotípica a drogas de primera y segunda línea

La PS indirecta a través del método de las pro­porciones utilizando medios sólidos es el método más común para probar la sensibilidad de los aislamientos de M. tuberculosis.

La utilización el sistema BACTEC-MGIT es el método preferido para realizar la PS a muchos agentes antibacilares, dada la estandarización de los medios e instrumentos MGIT. Este sistema de lectura automatizada es el más ampliamente uti­lizado en este nivel de complejidad, ya que acorta sensiblemente los tiempos de detección de resisten­cias a rifampicina e isoniacida, con sensibilidad del 95%-98%.2 La desventaja de este sistema para la detección de resistencia a etambutol, pirazinamida y estreptomicina (esta droga ya no se utiliza en el tra­tamiento, pero, en ciertas ocasiones, es necesaria su incorporación) radica en su baja reproductibilidad, por lo que se reserva su uso para los laboratorios de referencia nacional que posean otros métodos para confirmar los resultados a estas drogas. Las indicaciones ya fueron enumeradas anteriormente.

Pruebas de sensibilidad genotípicas (Line Probe Assay, LPAs)

La amplificación y detección de ácidos nucleicos del Complejo M. tuberculosis es una tecnología que ha demostrado ser muy sensible y específica. Algunas tecnologías de amplificación tienen la gran ventaja de poder detectar también resistencias a determinados fármacos antituberculosos.21

La PCR en tiempo real aplicada en algunas herramientas es la tecnología más utilizada en la actualidad. Estas herramientas detectan el ADN de Complejo Mycobacterium tuberculosis y pueden distinguir mutaciones en genes relacionadas con la resistencia a los fármacos. Por lo general, po­seen un costo considerable y exigen capacitación de personal para dar adecuadas respuestas a los requerimientos en materia de estándares interna­cionales y de auditoría externa.19, 21

Los LPA son una familia de pruebas basadas en PCR multiplex e hibridación reversa en tiras. Amplifican segmentos de los genes donde se pro­ducen las mutaciones más frecuentes que originan resistencia.21

Además, amplifican un segmento específico del Complejo M. tuberculosis, por lo que también permiten detectar al complejo. Entre los aislamien­tos de M. tuberculosis resistentes a rifampicina e isoniacida, la resistencia de hasta un 5% y 15%, respectivamente, podrían no ser detectadas por estos sistemas porque tienen alteraciones genéticas en regiones no investigadas por ellos.

Los LPA son técnicamente más complejos de realizar que el ensayo Xpert MTB / RIF-ULTRA o XDR; sin embargo, también pueden detectar resistencia a una gama de agentes de primera y segunda línea (por ejemplo, isoniacida, fluoroqui­nolonas e inyectables) y sus resultados se pueden obtener en 24 h.

Hay dos grandes grupos de ensayos:21

• Los que detectan CMT y resistencia a los agentes antituberculosis de primera línea (co­nocidos como LPA de primera línea [FL-LPA]) por ejemplo, GenoType MTBDRplus v1 y v2, Genoscholar NTM + MDRTB II.

• Los que detectan resistencia a los agentes anti­tuberculosis de segunda línea (conocidos como LPA de segunda línea [SL-LPA]), por ejemplo, GenoType MTBDRsl

La implementación de LPA para detectar la resistencia no elimina la necesidad de realizar el cultivo convencional y la PS fenotípica, ya que desempeñan un papel crítico en el seguimiento de las respuestas de los pacientes al tratamiento y la detección de resistencia adicional a otras drogas.7

En general, los LPA no pueden ser empleados como prueba diagnóstica inicial en reemplazo del ED, porque tienen sensibilidad limitada y requie­ren ser realizados en laboratorios con cierto nivel de complejidad.21

Dada la creciente incidencia de TBMR, el siste­ma LPA ha sido evaluado para detectar o descartar TBMR y tuberculosis extensamente resistente (TBXDR).

Otras técnicas moleculares para identificación de especie o su clonalidad

La secuenciación de nueva generación (NGS) tiene un gran potencial como método para diagnosticar rápidamente la TB resistente a medicamentos (TB-DR) en diversos entornos de laboratorios clínicos de referencia en todo el mundo.22

El enfoque NGS supera muchos de los desafíos importantes asociados con las pruebas fenotípicas convencionales, así como las limitaciones de otras pruebas moleculares menos completas, al propor­cionar información rápida y detallada de secuen­cias para múltiples regiones de genes o genomas completos de interés. Sin embargo, la adopción de estas tecnologías para el diagnóstico de TB-DR se ha visto obstaculizada debido a los altos costos, la integración dentro de los flujos de trabajo del labo­ratorio, los requerimientos de capacitación técnica para la utilización de la tecnología y la necesidad de una orientación experta respecto al manejo y la interpretación clínica de los datos.22

Otros métodos de diagnóstico complejos están dirigidos a conocer la transmisión de la enfermedad en la comunidad; esto se logra mediante la iden­tificación de la clonalidad de especies por técnicas moleculares, como ser RFLP (polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción) o por técnicas de secuenciación de genoma completo (SGC). En todos los casos, su uso queda restringido a laboratorios centrales de referencia.22

En la Tabla 3, se resumen los métodos de diag­nóstico de este nivel de complejidad.

Tabla 3. Métodos de diagnóstico correspondientes al tercer nivel de complejidad
Imagen

CONCLUSIONES

La estrategia y metas para la prevención, la aten­ción y el control de la tuberculosis después del 2015, que en forma abreviada es llamada “Fin a la TB”, aprobada por la 67.° Asamblea Mundial de la Salud en mayo del 2014 a través de la Resolu­ción WHA 67.1 y lanzada por la OMS, propone un abordaje del control de la TB que va más allá del sector de salud. Toma en consideración los factores biológicos, las condiciones socioeconómicas que define a las poblaciones en mayor riesgo de padecer de TB, así como el fortalecimiento de la investigación de nuevas vacunas, los métodos diagnósticos y medicamentos que trazarán el camino para llegar a la eliminación de esta enfermedad.

Los recientes avances en el diagnóstico de TB proveen una oportunidad para mejorar la capaci­dad de los laboratorios hacia un diagnóstico certero y precoz de la TB sensible y resistente. Uno de los elementos centrales para la adopción de estas nuevas tecnologías es la existencia de políticas de diagnóstico, que incluyan tanto la incorporación de estas técnicas en los algoritmos diagnósticos como el establecimiento de planes de capacitación y evaluación externa de calidad de las técnicas incorporadas.

Conflicto de intereses

Los autores de este trabajo no declaran conflicto de interés alguno.

BIBLIOGRAFÍA

1. McNerney R, Maeurer M, Abubakar I, et al. Tuberculosis Diagnostics and Biomarkers: Needs, Challenges, Recent Advances, and Opportunities. J Infect Dis 2012; 205 (Suppl 2): S147-58. https://doi.org/10.1093/infdis/jir860.

2. World Health Organization (WHO). Automated-real time nuclei acid amplification technology for rapid and simulta­neous detection of tuberculosis and rifampicin resistance: X-pert MTB/RIF assay for the diagnosis of pulmonary and extrapulmonary tuberculosis in adults and children. WHO/ HTM/TB/2013.16 World Health Organization https://apps.who.int/iris/handle/10665/112472

3. World Health Organization (WHO). Using the Xpert MTB/ RIF assay to detect pulmonary and extrapulmonary tuber­culosis and rifampicin resistance in adults and children. Expert Group Meeting Report 2013. World Health Orga­nization. https://apps.who.int/iris/handle/10665/112659

4. FIND [Internet]. GeneXpert negotiated prices. (date un­known) (Cited 2020 June 23). En: https://www.finddx.org/ pricing/genexpert/.

5. Hogan AB, Jewell BL, Sherrard-Smith D et al. Potential impact of the COVID-19 pandemic on HIV, tuberculosis, and malaria in low-income and middle-income countries: a modelling study. Lancet Glob Health 2020; 8(9): e1132- e1141. https://doi.org/10.1016/S2214-109X(20)30288-6.

6. GLI Practical Guide to TB Laboratory Strengthening, March 2017. En: https://www.stoptb.org/wg/gli/assets/documents/GLI_practical_guide.pdf

7. Programa Nacional de Control de la Tuberculosis. Normas Técnicas 2013, 4ta Edición Argentina. https://bancos.salud.gob.ar/sites/default/files/2018-10/0000000278cnt-normas-tecnicas-2013-tuberculosis.pdf

8. World Health Organization. Fluorescent light-emit­ting diode (LED) microscopy for diagnosis of tuberculo­sis: policy statement. World Health Organization 2011 WHO/HTM/TB/2011.8. En: https://apps.who.int/iris/handle/10665/44602

9. Organización Panamericana de la Salud 2008. Guía Técnica para el diagnóstico bacteriológico de la Tuberculosis, Parte 2: Cultivo. https://iris.paho.org/handle/10665.2/18616

10. World Health Organization. Xpert MTB/RIF imple­mentation manual: technical and operational ‘how-to’; practical considerations. World Health Organization 2014. WHO/HTM/TB/2014.1 En: https://apps.who.int/iris/handle/10665/112469

11. Eldholm V, Monteserin J, Rieux A, Lopez B, Sobkowiak B, Ritacco V, Balloux F. Four decades of transmission of a multidrug resistant Mycobacterium tuberculosis out­break strain. Nat Commun 2015; 11-6: 7119. https://doi.org/10.1038/ncomms8119

12. Zifodya JS, Kreniske JS, Schiller I et al. Xpert Ultra versus Xpert MTB/RIF for pulmonary tuberculosis and rifampicin resistance in adults with presumptive pulmonary tubercu­losis. Cochrane Database of Systematic Reviews 2021, Issue 2. Art. No.: CD009593. https://doi.org/10.1002/14651858.CD009593.pub5.

13. FIND. A multicentre non-inferiority diagnostic accuracy study of the Ultra assay compared to the Xpert MTB/RIF assay. Version 1.8, February 2017. En: https://www.finddx. org/wp-content/uploads/2019/12/Multicentre-noninferiori­ty-study-Ultra-Xpert-FEB2017-FINAL.pdf

14. World Health Organization. Update on the use of nucleic acid amplification tests to detect TB and drug-resistant TB: rapid communication. Geneva: World Health Organization; 2021. https://www.who.int/publications/i/item/update-on-the-use-of-nucleic-acid-amplification-tests-to-detect-tb-and-drug-resistant-tb-rapid-communication.

15. WHO consolidated guidelines on tuberculosis. Module 3: diagnosis–rapid diagnostics for tuberculosis detection. World Health Organization 2020. https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/332862/9789240007307-eng.pdf?sequence=1&isAllowed=y

16. Stop TB / USAID / GLI Practical Guide to Implementation of Truenat Tests for the Detection of TB and Rifampicin Resistance. Version 2: March 2021. https://www.stoptb.org/assets/documents/resources/publications/sd/Truenat_Implementation_Guide.pdf.

17. World Health Organization The use of loop-mediated isothermal amplification (TB-LAMP) for the diagnosis of pulmonary tuberculosis: policy guidance. World Health Organization 2016. WHO/HTM/TB/2016.11 https://www.who.int/publications/i/item/9789241511186

18. World Health Organization. The use of lateral flow urine lipoarabinomannan assay (LF-LAM) for the diagnosis and screening of active tuberculosis in people living with HIV. Policy guidance. World Health Organization 2015. WHO/ HTM/TB/2015.25. https://www.who.int/publications/i/item/9789241509633

19. Organización Panamericana de la Salud 2018. Guía Técnica para el diagnóstico bacteriológico de la Tuberculosis, Parte 3: Pruebas de Sensibilidad. Programa “Fortalecimiento de la Red de Laboratorios de Tuberculosis en la Región de las Américas” - Lima: ORAS - CONHU; 2017). https://www.paho.org/en/documents/technical-guide-bacteriological-diagnosis-tuberculosis-part-3-susceptibility-tests-2018

20. WHO consolidated guidelines on tuberculosis. Module 3: diagnosis - rapid diagnostics for tuberculosis detection, 2021 update. Geneva: World Health Organization; 2021. https://www.who.int/publications/i/item/9789240030589

21. World Health Organization. The use of molecular Line Probe Assay for the detection of resistance to second line anti-tuberculosis drugs. World Health Organiza­tion 2016. WHO/HTM/TB/2016.07. https://www.who.int/publications/i/item/9789241510561

22. World Health Organization. The use of next-generation sequencing technologies for the detection of mutations associated with drug resistance in Mycobacterium tuber­culosis complex: Technical guide. Geneva: World Health Organization 2018 (WHO/CDS/TB/2018.19). https://apps.who.int/iris/handle/10665/274443 Licence: CC BY-NCSA 3.0 IGO.

Compartir Artículo
Galería de imágenes
Mujer joven con afectación pulmonar bilateral y alteración de la conciencia

Autores:

Churin Lisandro
Ibarrola Manuel

img Ir ahora
Esta es una publicación
Open Access